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曲霉 IgG 抗体检测可减少结核患者合并 CPA 的漏诊

编者按:华人抗菌药物敏感性试验委员会(ChiCAST)是欧洲临床微生物和感染病学会(ESCMID)欧洲药敏试验委员会(EUCAST)下设在中国的药敏委员会,该委员会于 2017 年 3 月成立,委员来自中国两岸三地、欧洲、美国,专家领域涵盖临床微生物学、临床感染病学、临床药理学、畜牧兽医学、抗菌药物制药企业及感染诊断企业。委员会下设临床细菌学组、临床真菌学组、临床药理学组、临床感染学组及畜牧兽医学组等亚专业组。主要任务为药敏试验相关内容(如方法学、折点等)标准化,开展有价值的药敏相关临床研究,对有争议的临床标本检测进行确认和鉴定,建立 ChiCAST 网站,传播 EUCAST 文件,开展国际间合作与交流,开展临床微生物实验室标准化培训和宣传教学,促进我国抗菌药物敏感性试验工作的健康发展。

 

以下为大家带来《曲霉 IgG 抗体检测可减少结核患者合并 CPA 的漏诊》。

 

撰稿:

杜君洋 张园 王贺(北京市重点实验室丹娜生物分中心、ChiCAST 委员)

 

审校:
赵颖(北京协和医院、ChiCAST 学术部秘书)

 

 

结核病患者合并 CPA 发病率高,在 6%-18% 之间,且容易被漏诊,血清学检测可以对 CPA 进行早期诊断,降低死亡率。

 

2018 年,估计有 1000 万新发结核病患者,三分之二的结核病患者来自 8 个国家:印度(27%)、中国(9%)、印度尼西亚(8%)、菲律宾(6%)、巴基斯坦(5%)、尼日利亚(4%)、孟加拉国(4%)和南非(3%)。

我国成为结核发病的第二大国 [1]。结核病常会合并真菌感染,导致疾病的进一步恶化,死亡率较高 [2]

本文旨在探讨结核合并慢性肺曲霉病(CPA)的流行病学、发病机制及曲霉 IgG 抗体检测的临床意义,为减少结核病合并 CPA 漏诊提供临床依据。

 

 

NO.壹

 

 

结核病合并 CPA 的流行病学调查

 

结核病是 CPA 主要的基础疾病之一 [3-4]。据估计,结核病合并的 CPA 全球患病人数为 120 万以上。

 

大范围文献回顾,确定了有关肺结核之后残余肺空洞方面的研究,估计肺结核之后 CPA 的全球发病率。

 

经查实,21%(美国)到 35%(中国台湾)的肺结核病人产生肺空洞,并且其中约 22% 的病人患有 CPA。David W Denning 教授基于模型分析估计五年期内 CPA 的期间患病率范围。

 

2007 年, 全球有 770 万例肺结核,其中估计有 372,000 例患有慢性肺曲霉病,各地发病数介于欧洲的 11,400 例和东南亚的 145,372 例之间。

 

CPA 患病率处于每 10 万人小于 1 例(西欧大国和美国)至每 10 万人 42.9 例(尼日利亚和刚果民主共和国)之间。

 

中国和印度五年期患病率居中,分别为每 10 万人 16.2 例和 23.1 例 [5]。2015 年伊朗的一篇研究显示 124 位结核病患者中,13.7% 的患者同时感染 CPA[4]。患结核病后五年期 CPA 患病率估计为 117 万例,患病率达到 18 人/10 万人 [5]

 

2018 年的一篇研究显示 496 例 CPA 患者中,有 57%(267 例)患有结核病 [6]。近期朝阳医院发表的研究也显示 70 例 CPA 患者中,患有结核病的患者占 35.7%(25 例)[7]

 

CPA 往往发病隐匿,短期内致死率能达到 20-33%,未经干预时死亡率可达 50% 以上 [5,8]

 

NO.贰

 

结核病容易合并 CPA 的发病机制及临床表现

 

结核病患者容易合并 CPA 的发病机制主要包括以下几点:

 

1、 抗结核药物治疗疗程长,部分抗结核药属于广谱抗生素,可能是导致菌群失调、真菌感染的原因;

 

2 、肺组织结构的破坏、支扩、空洞为曲霉菌提供定植繁殖的场所;

 

3、 吞噬细胞和中性粒细胞功能的降低可增加曲霉病的风险;

 

4 、结核病的免疫是 T 细胞介导的细胞免疫。Th1、Th2 细胞协调平衡,在抗结核中发挥重要作用,细胞免疫功能受损增加了肺结核合并曲霉病的几率 [9]

 

CPA 患者最常见的临床表现包括:体重减轻,慢性咳嗽,严重程度不一的咯血,疲劳和/或呼吸短促 [10],偶尔会发生发烧和盗汗。

 

影像学表现主要包括:肺曲霉球;空洞、小空洞、空洞周围浸润增多或纤维化增加;结节影;肺叶的严重纤维性结构破坏,进行性实变伴「脓肿形成」等 [8]

 

由于 CPA 与结核病有相似的临床表现和影像学特征,难以早期诊断,及时治疗。

 

NO.叁

 

曲霉 IgG 抗体检测

可用于结核病患者合并 CPA 的诊断

 

美国传染病学会(IDSA)曲霉病指南和欧洲呼吸学会与临床微生物与传染病学会(ERS/ESCMID)CPA 指南均明确指出曲霉 IgG 抗体水平升高是 CPA 诊断的必要依据之一。

 

该方法是最敏感的微生物学方法 [8,11],特异性近 100%[12],误诊率低。

 

一项来自英国的包含 241 例 CPA 患者和 100 例健康人血清样本的大型研究结果表明,曲霉 IgG 抗体试剂盒检测 CPA,AUC 值为 0.902-0.996,敏感性为 75-96%,特异性为 97-99%[12]

 

2019 年 Medicine 杂志上发表了一篇前瞻性研究,肯定了曲霉 IgG 抗体检测在中国人群 CPA 的诊断价值,研究结果显示,曲霉 IgG 抗体检测 CPA 的敏感性和特异性分别为 70.00% 和 82.80%。

 

2019 年 Frontiers in Microbiology 杂志上发表了一篇关于曲霉 IgG 抗体检测在 CPA 诊断和随访的前瞻性研究。研究结果显示,曲霉 IgG 抗体在 CPA 患者诊断的敏感性和特异性分别为 84.1% 和 89.6%,抗真菌治疗的 CPA 患者曲霉 IgG 抗体水平随着患者病情好转而逐渐下降。

 

2019 年 BMC Infectious Diseases 杂志上发表了一篇曲霉 IgG 抗体检测在 CPA 诊断价值研究,研究结果显示曲霉 IgG 抗体检测在 CPA 的敏感性和特异性分别为 78.6% 和 94.4%。

 

2015 年 Rita Oladele 发表的一篇 poster 显示,涂阴肺结核或肺结核治疗失败的病人中约 30% 呈曲霉 IgG 抗体检测阳性。

 

2018 年的一篇结核合并 CPA 的研究指出,对排除复发性结核,并且曲霉特异性 IgG 抗体水平升高,影像学发生病变,伴有咳嗽或咯血的结核病患者,可以认为合并 CPA 感染 [13]

 

同时台湾国立大学医学院发表的关于曲霉 IgG 抗体筛查结核病患者合并 CPA 的研究发现:陈旧性结核患者曲霉 IgG 抗体的阳性率最高,在阈值为 20 mgA / L 时,IgG 抗体阳性率为 55.7%(107/192);在不同年龄段的人群中,年龄低于 45 岁的人群曲霉 IgG 抗体的阳性率最高,在阈值为 20 mgA / L 时,IgG 抗体阳性率高达 50.8%(218/429)[14]

 

 

总结

 

由于结核病合并 CPA 具有很高的发病率且容易被漏诊,所以对结核病患者合并 CPA 的早期诊断显得至关重要。

 

对于肺部影像学发生改变或抗痨疗效不佳的结核病患者,建议进行曲霉 IgG 抗体检测判断是否伴有 CPA,做到早期诊断,早期治疗!

 

 

参考文献

[1]. Goals MD, Goals SD, Strategy STB, Strategy ETB, Mdg T, Tb H, et al.gtbr2015_executive_summary WHO 2015 REPORT

[2]. Aghili S R, Shokohi T, Hedayati M T, et al. Invasive forms of Candida and Aspergillus in sputum samples of pulmonary tuberculosis patients attending the tuberculosis reference laboratory in Ghaemshahr, Northern Iran: An analysis of samples collected during the past 10 years[J]. International journal of mycobacteriology, 2016, 5: S179-S180.

[3]. Smith NL, Denning DW: Underlying conditions in chronic pulmonary aspergillosis including simple aspergilloma. Eur Respir J 2011, 37:865-872.

[4]. Hedayati MT, Azimi Y, Droudinia A, Mousavi B, Khalilian A, Hedayati N, Denning DW: Prevalence of chronic pulmonary aspergillosis in patients with tuberculosis from Iran. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 2015, 34:1759-1765.

[5]. Denning DW, Pleuvry A, Cole DC: Global burden of chronic pulmonary aspergillosis as a sequel to pulmonary tuberculosis. Bull World Health Organ 2011, 89:864-872.

[6]. Zhan M, Xu B, Zhao L, et al. The Serum Level of IL-1B Correlates with the Activity of Chronic Pulmonary Aspergillosis[J]. Canadian respiratory journal, 2018, 2018.

[7]. Guo Y, Bai Y, Yang C, et al. Evaluation of Aspergillus IgG, IgM antibody for diagnosing in chronic pulmonary aspergillosis: A prospective study from a single center in China[J]. Medicine, 2019, 98(16).

[8]. Denning D W, Cadranel J, Beigelman-Aubry C, et al. Chronic pulmonary aspergillosis: rationale and clinical guidelines for diagnosis and management[J]. European Respiratory Journal, 2016, 47(1): 45-68.

[9]. Sun Z, Zhu P, Li L, et al. Adoptive immunity mediated by HLA-A* 0201 restricted Asp f16 peptides-specific CD8+ T cells against Aspergillus fumigatus infection[J]. European journal of clinical microbiology & infectious diseases, 2012, 31(11): 3089-3096.

[10]. Denning D W, Pleuvry A, Cole D C. Global burden of chronic pulmonary aspergillosis as a sequel to pulmonary tuberculosis[J]. Bulletin of the World Health Organization, 2011, 89: 864-872.

[11]. Patterson T F, Thompson G R, Denning D W, et al. Practice guidelines for the diagnosis and management of aspergillosis: 2016 update by the Infectious Diseases Society of America[J]. Clinical Infectious Diseases, 2016, 63(4): e1-e60.

[12]. Page I D, Richardson M D, Denning D W. Comparison of six Aspergillus-specific IgG assays for the diagnosis of chronic pulmonary aspergillosis (CPA)[J]. Journal of Infection, 2016, 72(2): 240-249.

[13]. Page I D, Byanyima R, Hosmane S, et al. Chronic pulmonary aspergillosis commonly complicates treated pulmonary tuberculosis with residual cavitation[J]. European Respiratory Journal, 2019, 53(3): 1801184.

[14]. Lee M, Huang H, Chen L, et al. Seroprevalence of Aspergillus IgG and disease prevalence of chronic pulmonary aspergillosis in a country with intermediate burden of tuberculosis: a prospective observational study[J]. Clinical Microbiology and Infection, 2020.